دمشق، سورياDamascus, Syria +963 11 2222 797 info@labsyria.com
الرئيسيةHome المنتجاتProducts الأكاديميةAcademy المصادرResources مقالاتArticles للمصنّعينFor Manufacturers من نحنAbout تواصل معناContact
دليلGuide · 8 دقائق قراءةmin read

ما قبل تحليل PT وAPTT: قواعد عينة السترات التي تحمي النتيجةPT and APTT Preanalytics: Citrate Specimen Rules That Protect the Result

أغلب أخطاء PT وAPTT لا تبدأ عند جهاز التخثر، بل عند السحب والملء والنقل والتحضير. هذا الدليل يترجم مبادئ CLSI H21 وH03 إلى نقاط عمل عملية للمختبر السوري.Most PT and APTT errors do not begin at the coagulation analyzer, but during collection, filling, transport, and processing. This guide translates CLSI H21 and H03 principles into practical actions for Syrian laboratories.

PT and APTT Preanalytics: Citrate Specimen Rules That Protect the Result

أبرز النقاطKey takeaways

  • أنبوب التخثر ليس مجرد أنبوب أزرق، بل نظام نسبة دم إلى سترات يجب أن يملأ كما صمم.A coagulation tube is not merely a blue tube, it is a blood-to-citrate ratio system that must be filled as designed.
  • ارفض أو علّق العينات الناقصة أو المتخثرة وفق سياسة موثقة، ولا تحاول تصحيحها بتحليلها فقط.Reject or qualify underfilled or clotted specimens under documented policy, rather than trying to correct them by testing.
  • وثق زمن السحب والوصول والفصل، لأن الثبات جزء من صلاحية PT وAPTT.Record collection, receipt, and separation times because stability is part of PT and APTT validity.

أنبوب سترات الصوديوم 3.2% ونسبة 9 إلى 1The 3.2% sodium citrate tube and the 9:1 ratio

تجمع عينات PT وAPTT في أنبوب يحتوي عادة على سترات الصوديوم المنظمة بتركيز 3.2%. تعمل السترات على ربط الكالسيوم القابل للتأين بصورة عكوسة، ثم يضاف الكالسيوم في الاختبار لبدء القياس. تعتمد صحة النتيجة على نسبة تسعة أجزاء من الدم إلى جزء واحد من مانع التخثر. هذه النسبة ليست قاعدة شكلية، بل تحدد كمية السترات مقارنة ببلازما المريض وما يتبقى من الكالسيوم المتاح بعد إعادة التكلس في الجهاز. | P: PT and APTT specimens are usually collected in a tube containing 3.2% buffered sodium citrate. Citrate reversibly binds ionized calcium, and calcium is then added in the assay to initiate measurement. Result validity depends on nine parts blood to one part anticoagulant. This is not a cosmetic rule, it determines citrate relative to patient plasma and the calcium available after recalcification in the analyzer.

استخدم الأنبوب المخصص للاختبارات التخثرية فقط، وتحقق من تاريخ الصلاحية، ومن خط التعبئة، ومن أن نوع الأنبوب المعتمد في الإجراء يطابق تعليمات الكاشف والجهاز. لا تعتمد لون الغطاء وحده، إذ لا يوجد نظام لون عالمي ثابت. بعد السحب، اقلب الأنبوب برفق بالعدد الذي تحدده الشركة المصنعة لضمان امتزاج كامل دون رج عنيف أو رغوة. | P: Use the tube designated for coagulation testing only, and verify expiry, fill line, and that the tube type approved in the procedure matches reagent and analyzer instructions. Do not rely on cap color alone, as there is no universally fixed color system. After collection, gently invert the tube for the number of times specified by the manufacturer to achieve complete mixing without vigorous shaking or foam.

i

نسبة 9 إلى 1 هي نسبة حجم الدم إلى حجم السترات، وليست نسبة تقديرية يضبطها لون العينة أو مظهرها.The 9:1 ratio is a blood-volume to citrate-volume ratio, not an estimate based on specimen color or appearance.

لماذا يطيل نقص الملء أزمنة التخثر كذبا؟Why does underfilling falsely prolong clotting times?

عندما لا يمتلئ أنبوب السترات إلى علامة التعبئة، تبقى كمية السترات ثابتة بينما ينقص حجم الدم والبلازما. تصبح نسبة السترات إلى البلازما مرتفعة، وتربط السترات كمية أكبر نسبيا من الكالسيوم الذي يضاف في التفاعل. قد تكون النتيجة PT أو APTT مطولة كذبا، وهو أثر ما قبل تحليلي قد يوحي بنقص عامل أو علاج مضاد للتخثر أو اضطراب نزفي غير موجود. | P: When a citrate tube is not filled to its line, citrate volume remains fixed while blood and plasma volume decrease. The citrate-to-plasma ratio becomes excessive, and citrate binds a relatively larger amount of the calcium added to the reaction. PT or APTT can be falsely prolonged, a preexamination effect that may suggest factor deficiency, anticoagulant therapy, or a bleeding disorder that is not present.

لا تضع قاعدة قبول مبنية على التخمين البصري فقط. يجب أن يحدد الإجراء المحلي حد التعبئة المقبول، وطريقة التحقق، والتصرف عند النقص، مع مراعاة تعليمات الأنبوب والكاشف والتحقق الداخلي. إذا كانت عينة الفراشة هي أول أنبوب تخثر مسحوب، استخدم أنبوب إهدار مناسب عند الحاجة لإزالة حجم الهواء من الأنبوب، لأن الهواء قد يؤدي إلى نقص الملء. لا تستخدم أنبوب الإهدار نفسه للاختبار. | P: Do not create an acceptance rule based on visual guessing alone. The local procedure should define an acceptable fill limit, verification method, and action for underfill, considering tube and reagent instructions and internal verification. If a butterfly collection makes the coagulation tube the first drawn tube, use an appropriate discard tube when needed to clear air from the tubing because air can cause underfill. Do not use the discard tube for testing.

"عينة التخثر الناقصة ليست عينة صغيرة، بل عينة بنسبة مانع تخثر خاطئة.""An underfilled coagulation specimen is not simply a small specimen, it is a specimen with the wrong anticoagulant ratio."

الهيماتوكريت المرتفع فوق 55% وتعديل الستراتHigh hematocrit above 55% and citrate adjustment

عند هيماتوكريت يزيد على 55%، تكون كمية البلازما في حجم الدم المسحوب أقل من المعتاد، بينما تبقى كمية السترات في الأنبوب القياسي كما هي. لذلك تصبح السترات زائدة بالنسبة إلى البلازما، وقد تتأثر نتائج اختبارات التخثر. توصي المصادر المرتبطة بـ CLSI وICSH بتعديل حجم السترات للحفاظ على النسبة المناسبة في هذه الحالات. لا ينبغي تأجيل هذا القرار إلى ما بعد ظهور نتيجة غير متوقعة إذا كانت قيمة الهيماتوكريت متاحة ومعروفة. | P: When hematocrit exceeds 55%, the plasma volume in the collected blood is lower than usual while citrate volume in a standard tube remains unchanged. Citrate is therefore excessive relative to plasma, and coagulation test results may be affected. Sources linked to CLSI and ICSH recommend citrate adjustment to maintain the appropriate ratio in these cases. This decision should not wait until an unexpected result appears if the hematocrit value is available and known.

اجعل تعديل السترات إجراء مقيدا ومحسوبا ومراجعا، لا ممارسة مرتجلة على كرسي السحب. يستخدم المختبر معادلة معتمدة في سياسته، ويجهز الأنبوب من شخص مدرب، ويوثق قيمة الهيماتوكريت وحجم السترات المعدل وهوية المراجع. إذا تعذر التعديل أو إعادة السحب، اتبع سياسة الإبلاغ المعتمدة مع تعليق واضح، ولا تدع نتيجة تبدو رقمية دقيقة تخفي محدودية العينة. | P: Make citrate adjustment a controlled, calculated, reviewed procedure, not an improvised practice at the phlebotomy chair. The laboratory uses a formula approved in its policy, a trained person prepares the tube, and the hematocrit, adjusted citrate volume, and reviewer identity are documented. If adjustment or recollection is impossible, follow the approved reporting policy with a clear comment, and do not let a precise-looking number conceal specimen limitations.

ترتيب السحب ومنع تلوث الإضافاتOrder of draw and prevention of additive contamination

يهدف ترتيب السحب إلى تقليل انتقال إضافات الأنابيب من أنبوب إلى آخر. وفق ترتيب CLSI المنشور، تجمع زجاجات أو أنابيب زرع الدم أولا عند طلبها، ثم أنبوب سترات الصوديوم، ثم أنابيب المصل، فالهيبارين، فـ EDTA، ثم الفلوريد أو الأوكسالات. يهم أنبوب السترات أن يأتي قبل الأنابيب ذات منشطات التخثر أو EDTA، لأن انتقال الإضافات قد يغير اختبارات التخثر. | P: Order of draw aims to minimize additive carryover from one tube to another. In the published CLSI order, blood culture bottles or tubes are collected first when requested, followed by sodium citrate, serum tubes, heparin, EDTA, then fluoride or oxalate. It is important that citrate precede tubes containing clot activators or EDTA because additive carryover can alter coagulation tests.

لا تسحب عينة التخثر من قثطرة أو خط وريدي يمر فيه هيبارين أو سوائل وريدية إلا وفق إجراء خاص موثق يحدد الإيقاف والحجم المهدور والتحقق من الملاءمة. عند وجود صعوبة في السحب، تجنب تكرار المناورات العنيفة أو الشفط القوي الذي قد يسبب انحلال الدم أو تنشيط التخثر. إذا وُجد شك معتبر في تلوث العينة، فإعادة السحب غالبا أكثر أمانا من محاولة تفسير نتيجة ملتبسة. | P: Do not collect a coagulation specimen from a catheter or line exposed to heparin or intravenous fluids except under a documented special procedure defining interruption, discard volume, and suitability verification. During a difficult draw, avoid repeated forceful maneuvers or strong aspiration that can cause hemolysis or activate coagulation. When meaningful contamination is suspected, recollection is often safer than attempting to interpret an ambiguous result.

  • اجمع سترات الصوديوم بعد زرع الدم إن طلب، وقبل أنابيب المصل وEDTA.Collect sodium citrate after blood cultures when requested, and before serum and EDTA tubes.
  • لا تنقل دما بين الأنابيب لتصحيح خطأ في السحب.Do not transfer blood between tubes to correct a collection error.
  • اتبع إجراء خاصا موثقا لعينات الخطوط الوعائية.Follow a documented special procedure for vascular-line specimens.

انحلال الدم والخثرات والليبميةHemolysis, clots, and lipemia

افحص عينة السترات قبل التحليل للكشف عن خثرة مرئية، وانحلال دم، وتغيرات شديدة في المظهر. الخثرة تعني أن جزءا من عوامل التخثر أو الصفيحات قد استهلك أو أن الخلط كان غير كاف، ولذلك تكون العينة غير صالحة عادة لاختبارات PT وAPTT. لا تحاول تجاهل خثرة صغيرة أو إجراء التحليل من فوقها، بل طبق معيار الرفض أو إعادة السحب وسجل السبب. | P: Inspect the citrate specimen before testing for visible clots, hemolysis, and marked appearance changes. A clot indicates that coagulation factors or platelets may have been consumed, or that mixing was inadequate, so the specimen is generally unsuitable for PT and APTT. Do not ignore a small clot or test above it, instead apply the rejection or recollection criterion and document the reason.

قد تؤثر الهيموليز والليبمية واليرقان في بعض الطرق، خصوصا الأنظمة البصرية، وقد تعكس الهيموليز أيضا مشكلة في السحب أو النقل. لا يكفي وصف العينة بأنها "مقبولة" أو "غير مقبولة" بصورة عامة، لأن أثر التداخل يعتمد على طريقة القياس وحدود الشركة المصنعة والتحقق المحلي. استخدم مؤشرات العينة أو التقييم البصري الموثق حسب قدرات المختبر، وطبق قواعد المنصة الخاصة بك، ثم تواصل بوضوح عند الحاجة إلى عينة بديلة. | P: Hemolysis, lipemia, and icterus may affect some methods, particularly optical systems, and hemolysis can also indicate a collection or transport problem. It is insufficient to label a sample simply acceptable or unacceptable because interference depends on the measurement method, manufacturer limits, and local verification. Use specimen indices or documented visual assessment according to laboratory capability, apply your platform-specific rules, and communicate clearly when a replacement specimen is needed.

زمن النقل وحرارته وتحضير بلازما فقيرة بالصفيحاتTransport time, temperature, and platelet-poor plasma preparation

ابدأ عداد الزمن عند السحب، لا عند وصول العينة إلى المختبر. انقل الأنبوب في وضع آمن وبدرجة حرارة الغرفة ما لم تنص طريقة محددة على خلاف ذلك، وتجنب التأخير والحرارة الشديدة والبرودة غير المناسبة والرج العنيف. يوضح CLSI H21 أن الثبات يختلف باختلاف الاختبار وحالة المريض والمعالجة اللاحقة، ولذلك يجب أن تبني مختبرك حدود الزمن والحرارة على الوثيقة المرجعية وتعليمات الكاشف والتحقق المحلي، لا على قاعدة واحدة لكل اختبارات التخثر. | P: Start the time clock at collection, not laboratory receipt. Transport the tube safely at room temperature unless a specific method states otherwise, and avoid delay, excessive heat, inappropriate cold, and vigorous agitation. CLSI H21 explains that stability differs by test, patient status, and subsequent processing, so your laboratory should establish time and temperature limits from the reference document, reagent instructions, and local verification, not one rule for every coagulation assay.

حضر بلازما فقيرة بالصفيحات باستخدام طرد مركزي وإجراء متحقق منهما، ثم افصل البلازما أو حللها في الإطار الزمني المعتمد. يهم تقليل الصفيحات المتبقية لأن الفوسفوليبيدات الصفيحية قد تؤثر في بعض اختبارات التخثر الحساسة، وخاصة عند التحاليل التي تتطلب معالجة إضافية. وثق إعدادات جهاز الطرد المركزي، ووقت الفصل، وحالة العينة، وتأكد من أن العاملين يعرفون متى يلزم طرد ثان أو فصل إضافي وفقا لنوع الاختبار. | P: Prepare platelet-poor plasma using verified centrifugation and procedures, then separate plasma or test it within the approved time frame. Reducing residual platelets matters because platelet phospholipids can affect some sensitive coagulation assays, especially tests requiring additional processing. Document centrifuge settings, separation time, and specimen condition, and ensure staff know when a second spin or further separation is required according to test type.

المراجعReferences

  1. CLSI: H21 Collection, Transport, and Processing of Blood Specimens for Testing Plasma-Based Coagulation Assays, CLSI
  2. CLSI: Order of Blood Draw Tubes and Additives, CLSI
  3. CLSI: H03-A5 Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, ANSI Webstore
  4. Kitchen S, et al: International Council for Standardisation in Haematology recommendations for collection of blood samples for coagulation testing, International Journal of Laboratory Hematology
  5. Kitchen S, et al: ICSH recommendations for processing of blood samples for coagulation testing, International Journal of Laboratory Hematology
  6. Croatian Society of Medical Biochemistry and Laboratory Medicine: National recommendations for blood collection, processing, performance and reporting of results for coagulation screening assays, Biochemia Medica
  7. CAP: Hematology and Coagulation Checklist, College of American Pathologists

روابط لجهاتٍ ومعايير عالمية موثوقة. المحتوى تعليميٌّ عام ولا يغني عن الإجراءات المعتمدة في مختبرك.Links to authoritative international bodies and standards. This content is general education and does not replace your laboratory’s validated procedures.

للمزيدKeep reading

تعلّم هذا الموضوع بعمق في أكاديمية لاب سوريا المجانية.Learn this in depth in the free LabSyria academy.

إلى الأكاديميةGo to the academy